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β-ラクタム系抗生物質

β-ラクタム系抗生物質に対する耐性

ペニシリンは最も古いβ-ラクタム系抗生物質であり、その後の開発には第一世代から第四世代のセファロスポリン、モノバクタム、カルバペネムなどのβ-ラクタム系抗生物質が含まれている。 ペニシリンの導入直後に、ブドウ球菌に耐性が観察された。 Β-ラクタム系抗生物質は、ペニシリン結合タンパク質(PBPs)と呼ばれる結合酵素によって細胞壁合成を妨害する。, Β-ラクタムに対する耐性は、主にラクタム環を破壊するβ-ラクタマーゼの存在、またはこれらの抗生物質によって阻害されない変化したPBPsの存在のいずれかによって引き起こされる。 グラム陽性細菌ではβ-ラクタマーゼは細胞外環境に排泄され,グラム陰性細菌ではペリプラスチック空間に排泄される。 Β-ラクタム系抗生物質がこの細菌に対して有効であるかどうかは、いくつかの要因に依存する(Fig. 131.,1)を含む:2

環境中の抗生物質の濃度;

外膜を通る侵入速度(グラム陰性細菌の場合);

β-ラクタマーゼの量;

β-ラクタマーゼによる抗生物質の加水分解速度;および

抗生物質に対するPBPsの親和性。

β-ラクタマーゼの数は、ペニシリンの導入以来、着実に増加しています。 Β-ラクタマーゼはそれらの機能的側面によって分類されている。,3このシステムはいくつかの基質のための加水分解速度およびclavulanic酸による阻止のレベルに基づいていますが、単純な点突然変異は分類を変えるかもしれません。 それらはまた、β-ラクタマーゼをコードするヌクレオチド配列に従って分類されている。4つのクラスA、CおよびDはそれらの活性部位にセリンを有するが、クラスBは活性部位に亜鉛原子を有する。 クラスA酵素は主にプラスミドにコードされるが、クラスC酵素は一般的に染色体にコードされるが、これらのβ-ラクタマーゼの遺伝子もますますプラスミドにコードされるようになっている。, クラスA酵素は、一般に構成的に発現される。 クラスC酵素遺伝子は、サルモネラ属を除くほとんどすべてのグラム陰性桿菌に存在する。 しかし、その存在は必ずしも抵抗につながるとは限らない。 クラスC酵素は通常誘導性であり、β-ラクタマーゼ活性の発現には合計四つの遺伝子が必要である。 大腸菌は、ampC、ampDおよびampG遺伝子を有するが、ampR遺伝子を欠いている。 なぜ大腸菌はこれらの遺伝子の三つを有し、第四を欠いているのかは不明である。 クラスDはoxacillinを加水分解できる酵素の限られたグループです;それらはクラスCの酵素と関連しています。, クラスBは、多くがカルバペネマーゼとして作用するため、ますます重要である。 Β-ラクタマーゼの大きさは30-40kdaである。

腸内細菌科における最も一般的なβ-ラクタマーゼは、TEM-1、TEM-2およびSHV-1である(TEMは、分離物が得られた患者の名前の最初の三文字であり、SHVはスルフヒ これらは単純なペニシリナーゼであり、クラブラン酸やタゾバクタムなどの化合物によってその活性を阻害することができ、それによってペニシリン誘導体を再び活性にする。, しかし、TEMおよびSHV酵素は突然変異によってより広いスペクトルを容易に得ることができ、第三世代のセファロスポリンに対する耐性につながる可 Aztreonam、ceftazidime、cefotaximeまたはceftriaxoneの不活性化はそのような拡張スペクトルのβラクタマーゼ(ESBL)の存在のための表示器として考慮されます。 しかしながら、これらの抗生物質はまた、ampcの過剰産生によって不活性化され得る。

第三世代のセファロスポリンに対する耐性は、1983年に最初に記載され、TEM関連β-ラクタマーゼをコードするプラスミドによって媒介された。, ESBLsの大半はKlebsiella pneumoniaeで見つけられますが、他の腸内細菌科でもますます見つけられます。 拡張スペクトルβ-ラクタマーゼはプラスミドによってコードされ、高度に伝達される。 160以上のTEM型および100SHV型β-ラクタマーゼが記載されており、ほぼ半分はESBLsであるが、TEMファミリーの少なくとも10メンバーはもはやクラブラン酸(阻害剤耐性TEM)によって阻害されない。 さらに、60CTX-M型、および10OXA型ESBLsが知られている。 これらの一般的に発生するESBLファミリーのほかに、他のEsblが記載されている。,5

セファミシナーゼとも呼ばれるいくつかのプラスミドコードされたセファロスポリナーゼは、プラスミドコードされたampC β-ラクタマーゼに由来するが、恒常的に産生される。 腸内細菌科におけるプラスミドコードされたampC β-ラクタマーゼの有病率は増加している。 病院かコミュニティを通したこれらの遺伝子の更なる広がりは更にセファロスポリンの使用を危険にさらすかもしれません。

別の基は、カルバペネマーゼを含む。 これらの酵素は、イミペネムのような高活性なカルバペネムおよびエルタペネムおよびドリペネムのような新しいカルバペネムを不活性化する。, 過去にはこれらの酵素は染色体にしかコードされていなかったが、ますますこれらのβ-ラクタマーゼをコードする遺伝子はプラスミドにも見られる。 これは、カルバペネムに対する耐性の増加につながる。 しかし,緑膿菌およびAcinetobactersppを除いて抵抗性はまだまれである。 多くのカルバペネマーゼはクラスBに属するが,クラスA酵素であるオキサカルバペネマーゼが報告されている。 さらに,三つのK.pneumoniaeカルバペネマーゼ(KPC)が知られている。, これらの酵素は、サルモネラ菌を含む他の腸内細菌科でも報告されており、米国東部でいくつかの発生を引き起こしている。

変化したPbpもβ-ラクタム系抗生物質に対する耐性の主な理由である。 変化したPBPは、ブドウ球菌におけるメチシリン耐性に関与している。 MRSAおよびメチシリン耐性Staphylococcusepidermidis(MRSE)は院内感染の重要な原因である。 これらの感染症は、MRSAおよびMRSEの両方が一般に多抵抗性であり、限られた数の抗生物質のみに感受性であるため、治療が困難である。,

このPBP2aはmecA遺伝子によってコードされる。 メチシリン耐性の調節は複雑である。 発現は不均一であり得、少数の細胞のみが表現型を発現するが、すべての細胞は遺伝子型が同一であり、meca遺伝子を有する。 突然変異を通じて、抵抗性表現型は均質になることがあり、これは大部分の分離株における場合である。 発現はまた、プラスミドエンコードされたβ-ラクタマーゼ調節(blaR)システムblaR1とmec関連mecR1とmecIシステムと相互作用するblaIインデューサーリプレッサーシステム,6mec決定基は、遺伝子のはるかに高い有病率を有するコアグラーゼ陰性ブドウ球菌に由来するように見え、水平転送は定期的に行われるように見える。

mecA遺伝子は、ブドウ球菌染色体カセット(SCCmec)上に位置する。 Sccmecの六つの基本的なタイプは、ccr遺伝子の種類および完全なmeciおよびmecr遺伝子(それぞれmec複合体AおよびB)の有無に基づいて記載されている(図。 131.2). これらの基本的なタイプの中でかなりの変化が観察された。, これは、一部のSCCmecへの抵抗プラスミドおよび/またはトランスポゾンの挿入によるものである。 Ccr遺伝子は,直接反復を認識し,SCC要素の動員,それにより異なるブドウ球菌間の移動に関与する部位特theなリコンビナーゼである。 Sccmecはブドウ球菌のorfx遺伝子に常に組み込まれている。7mecAの存在に加えて、いくつかのメチシリン耐性株はβ-ラクタマーゼの過剰生産者である。,8,9

肺炎球菌におけるペニシリンに対する耐性は、変化したPBPsの存在によるものであり、このメカニズムは、n.gonorrhoeaeにおける染色体媒介ペニシリン耐性 Enterococcus faeciumでは、PBP5の変異がアンピシリンに対する耐性を担っている。 アンピシリン耐性は、病院関連株にしばしば見出される。 バンコマイシン耐性臨床分離株は、しばしばアンピシリン耐性でもある。例えば、Enterobacteriaceaeのようなグラム陰性細菌、特にp.aeruginosaおよびAcinetobactersppにおけるポリンの減少。,、β-ラクタム耐性に寄与するが、それ自体では耐性を説明するには不十分である。

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