Welcome to Our Website

Frontiere în Oncologie

Introducere

Next-generation sequencing (NGS) s-a extins rapid în stabilirea clinice în haemato-oncologie și oncologie, deoarece poate aduce mari beneficii pentru diagnostic, selecție de tratament, și/sau prevestire pentru mulți pacienți (1)., Recent, au fost publicate mai multe articole despre validarea NGS-urilor profunde vizate în oncologia clinică (2, 3), inclusiv o recomandare cuprinzătoare a Asociației pentru Patologie Moleculară și a Colegiului patologilor americani (1). Cu toate acestea, lipsa standardizării metodelor NGS vizate limitează în continuare punerea lor în aplicare în practica clinică (4).

o provocare, în special, este detectarea corectă a mutațiilor prezente la frecvențele alelei cu variante joase (VAF) și standardizarea adâncimii de acoperire a secvențierii (1, 5, 6)., Acest lucru este deosebit de important pentru mutații care au clinice a efectelor în subclonal frecvențe (1), cum ar fi cazul TP53 mutații genetice (TP53mut) in leucemia limfocitară cronică (LLC) (7, 8). Aberațiile TP53 (TP53mut și / sau ștergerea cromozomului 17P) sunt printre cei mai puternici markeri prognostici și predictivi care ghidează deciziile de tratament în LLC (9)., În zilele noastre, Cercetare European de Inițiativă privind Leucemia Limfocitară Cronică (ERIC) recomandă detectarea TP53mut cu o limită de detecție (LOD) de cel puțin 10% VAF (10), și un corp tot mai mare de dovezi există dedicat impactului clinic de mici TP53 mutant subclone în LLC (7, 8).secvențierea Sanger și NGS direcționate profund sunt în prezent tehnicile cele mai utilizate pentru analiza TP53mut (10), precum și pentru analiza altor gene cu impact clinic la frecvențe joase ale alelelor., Deși secvențierea Sanger oferă o abordare de secvențiere relativ accesibilă, îi lipsește sensibilitatea necesară pentru detectarea subclonelor datorită limitei sale de detecție de 10-20% din alelele mutante (10). Analiza bazată pe NGS a câștigat astfel importanță în laboratoarele de diagnostic pentru detectarea variantelor somatice și sunt dezvoltate diverse evoluții tehnice ale strategiilor de corectare a erorilor, atât computaționale, cât și experimentale, pentru identificarea exactă a variațiilor genetice de nivel scăzut (11)., Prin urmare, abordăm importanța determinării corecte a adâncimii de secvențiere în diagnosticul NGS pentru a obține o detecție sigură și reproductibilă, nu numai a variantelor VAF scăzute. În cele din urmă, am realizat o diluție experiment pentru a confirma calculele teoretice, și suntem aproape de a discuta experiența noastră cu diagnostic de detectare a TP53mut la pacientii cu LLC și alte perspective despre NGS standardizare în diagnosticare a cancerului.,

NGS Secvențiere Adâncime și Rata de Eroare

NGS secvențiere adâncime afectează în mod direct reproductibilitatea varianta de detectare: cel mai mare număr de aliniat secvență citește, cea mai mare încredere la baza apel la o anumită poziție, indiferent de faptul dacă la bază este aceeași ca bază de referință sau este mutant (1). Cu alte cuvinte, erorile de secvențiere individuale sunt irelevante statistic atunci când sunt depășite de citirile corecte., Astfel, adâncimea de acoperire dorită trebuie determinată pe baza LOD intenționată, a toleranței pentru rezultate fals pozitive sau fals negative și a ratei de eroare de secvențiere (1, 11).folosind o distribuție binomială, se poate calcula probabilitatea de rezultate fals pozitive și fals negative pentru o rată de eroare dată, precum și LOD-ul intenționat, iar pragul pentru o variantă care solicită o anumită adâncime poate fi estimat (1)., De exemplu, având în vedere o rată de eroare de secvențiere de 1%, o sarcină de alelă mutantă de 10% și o adâncime de acoperire de 250 de citiri, probabilitatea de a detecta 9 sau mai puține citiri mutante este, conform distribuției binomiale, 0,01%. Prin urmare, probabilitatea de a detecta 10 sau mai multe citiri mutante este de 99,99% (100-0, 01%), iar pragul pentru o variantă de apelare poate fi definit. Cu alte cuvinte, o adâncime de acoperire de 250 cu un prag de cel puțin 10 citiri mutante va avea un 99.,99% probabilitatea ca 10% din sarcina alelei mutante să nu fie ratată de apelarea variantei (deși poate fi detectată într-o proporție diferită). În acest fel, riscul unui rezultat fals negativ este mult redus la minimum. Pe de altă parte, probabilitatea falselor pozitive depinde în mare măsură de rata de eroare de secvențiere (deoarece precizia tuturor măsurătorilor analitice depinde de raportul semnal-zgomot) (1, 11). În exemplul nostru, probabilitatea unui rezultat fals pozitiv este de 0,025%; cu toate acestea, rata de rezultate fals pozitive nu este de neglijat atunci când scăderea LOD la o valoare apropiată de rata de eroare., Ratele de eroare NGS intrinseci convenționale variază între 0,1 și 1% (scor de calitate Phred de 20-30) (1, 11) în funcție de platforma de secvențiere, de conținutul GC al regiunilor țintă (12) și de lungimea fragmentului, așa cum se arată în Illumina paired-end sequencing (13). Prin urmare, detectarea de variante la VAFs <2% este afectată de un risc ridicat de un rezultat fals pozitiv, indiferent de adâncimea de acoperire., De asemenea, este important să menționăm că succesiunea rata de eroare se aplică numai pentru erori produse prin secvențierea în sine și nu include alte erori introduse în ADN-ul de procesare și biblioteca de pregătire, în special în timpul amplificare pași, care crește în continuare ratele de eroare (1, 11).în prezent, nu există un consens cu privire la acoperirea minimă necesară într-un cadru clinic, utilizând o resecvenție orientată în profunzime de către NGS, astfel încât fiecare laborator trebuie să-și stabilească parametrii proprii pentru a satisface o calitate suficientă (1, 5)., Până în prezent, doar câteva studii au recomandat minim de criterii de acoperire pentru deep vizate NGS în oncologie clinică: 500 adâncimea de acoperire și un LOD de 5% (2), 300-500 adâncimea de acoperire, fără a-l sfida LOD (3), 250 de profunzime și un LOD de 5% cu prag de ajustare la 1.000 de adâncimea de acoperire este necesară în cazuri de eterogene variante în tumorală redusă celularitatea probe (1), și 100 de adâncime cu cel puțin 10 varianta citește și un LOD de 10% (10)., Conform distribuției datelor binominale, o adâncime de acoperire de 250 ar trebui să fie într-adevăr suficientă pentru a detecta VAF de 5% cu un prag de citire a variantei ≥5 (Figura 1). Pe de altă parte, analiza NGS cu o adâncime de acoperire de 100, împreună cu o cerință de cel puțin 10 variante de sprijin, conform recomandărilor consorțiului ERIC (10), ar avea ca rezultat un fals negativ de 45% pentru eșantioanele cu o LOD de 10%., Pentru a confirma aceste calcule teoretice, am efectuat două experimente de diluare independente pentru a estima performanța analizei TP53 NGS pentru a detecta 10% VAF la o adâncime de acoperire de 100 de citiri. Într-adevăr, am detectat 30% din falsele negative (5 probe pozitive din 7 probe true-pozitive și 9 probe pozitive din 13 probe true-pozitive) în două serii de secvențiere independente. Din păcate, rata fals negativă este adesea subestimată în resecvența vizată., De asemenea, un studiu recent a investigat inter-rezultatele de laborator somatice varianta de detectare cu VAFs între 15 și 50% în 111 laboratoare au raportat o Determinare de 5-15% (6) arată că marile erori în diagnostic NGS pot apărea de rezultate fals negative, chiar și în probele cu mare mutație sarcini (6). Dintre cele trei rezultate fals pozitive simultane, toate variantele au fost detectate corect, dar caracterizate greșit (6)., Deoarece laboratoarelor nu li s-a solicitat să raporteze adâncimea de acoperire pentru alte regiuni decât variantele identificate (6), putem presupune doar că acoperirea scăzută sau pragurile ridicate de apelare a variantelor au contribuit la rezultatele fals negative. Aceste rezultate evidențiază în continuare necesitatea unor parametri standardizați ai adâncimii de acoperire în NGS-urile de diagnosticare, luând în considerare erorile de secvențiere, precum și erorile specifice testului.

figura 1

Figura 1. LOD în funcție de adâncimea de acoperire în funcție de distribuția binomială., Acoperire adâncimea necesară pentru a menține un destinate LOD (în 3-20% VAF range) pentru trei probabilitatea cumulată setări: pentru fals pozitive probabilitate de 0,001 și adevărat pozitiv de 0.999, un LOD de 20% este atins la 61 de acoperire adâncime, un LOD de 10% la 175, un LOD de 5% la 562, și un LOD de 3%, la 1.650. Pentru Probabilitatea fals pozitivă de 0.010 și adevărat pozitiv de 0.990, un LOD de 20% este atins la 31, un LOD de 10% la 81, un LOD de 5% la 288 și, respectiv, un LOD de 3% la adâncimea de acoperire 886. Pentru Probabilitatea fals pozitivă de 0,050 și adevărat pozitiv de 0.,950, o LOD de 20% este atinsă la 30, o LOD de 10% la 30, o LOD de 5% la 124 și, respectiv, o LOD de 3% la adâncimea de acoperire 392.

Frecvența de TP53 Subclonal Mutații în LLC Detectat Prin Diagnostic NGS

În scopul de a evalua apariție a scăzut VAF în lumea reală setări, am revizuit nostru cohorta de pacienți cu LLC examinat pentru TP53mut în nostru de diagnostic de laborator. TP53mut a fost evaluat așa cum s-a raportat anterior (14, 15). Pe scurt, TP53 (exoni 2-10 inclusiv 2 bp intronic se suprapun, 5′ și 3’UTR) a fost analizată folosind 100 ng gDNA pe reacție., Amplicon pe bază de biblioteci au fost ordonate ca asociat-end pe MiSeq (2×151, Illuminati) cu obiectiv minim citit adâncimi de 5.000 x. LOD de TP53mut a fost înființat la 1%, și variantele în intervalul 1-3% au fost confirmate de replicare. Consimțământul informat în scris a fost obținut de la toți pacienții care au fost înrolați în conformitate cu declarația de la Helsinki, iar studiul a fost aprobat de comitetul local de etică.

De diagnostic cohorta de 859 pacienții cu LLC (aprilie 2016–aprilie 2019), 25% (215/859) au fost pozitive pentru TP53mut, și de cei, de 52,6% (113/215) efectuate variante cu VAF la 10% sau mai mic., În conformitate cu observațiile noastre, un studiu recent (8) a raportat prezența a 63 și 84% povara redus (Sanger negativ) TP53muts la pacientii cu LLC la momentul diagnosticului și la momentul de tratament, respectiv, și a confirmat impactul negativ asupra supraviețuirii globale de TP53muts de mai sus 1% VAF la momentul de tratament (8).,

Calculator pentru Diagnosticare NGS Setări pentru Detectarea Subclonal Mutații

Pentru a ajuta laboratoare cu determinarea minimă de acoperire corespunzătoare parametrilor, oferim un mod simplu, user-friendly teoretice calculator (software), bazate pe distribuția binomială (Figura 2), descrise în Suplimentare de Fișiere. O aplicație web (sau desktop) și coduri sursă independente în R sunt accesibile pe Github: https://github.com/mvasinek/olgen-coverage-limit., Folosind acest calculator, parametrii corecți ai adâncimii de secvențiere și numărul minim corespunzător de variante citite pentru o rată de eroare de secvențiere dată și LOD intenționat pot fi ușor determinate. În plus, utilizatorii pot lua în considerare și alte erori prin simpla adăugare a erorilor specifice testului la rata de eroare de secvențiere și folosind această eroare generală ca intrare în calculator. De exemplu, în cazul analizei mutaționale TP53 am calculat cu eroarea generală de ~1.16%, astfel am stabilit cerințele minime de adâncime de acoperire la 2.000 cu prag de minim 40 de citiri pentru 3% VAF.,

figura 2

Figura 2. OLGEN Coverage Limit calculator – un calculator teoretic simplu potrivit pentru determinarea adâncimii de secvențiere corectă și numărul minim corespunzător de variante citește în funcție de distribuția binomială pentru o rată de eroare de secvențiere dată și LOD destinate recomandat pentru diagnostic NGS. Exemple de adâncimi de secvențiere calculate și numărul minim corespunzător de citiri ale variantelor recomandate pentru variantele cu (A) 10% VAF și 99,9% probabilitate de detectare și (B) 3% VAF și 99,9% probabilitate de detectare.,deși diagnosticul NGS a câștigat importanță în setările clinice pentru evaluarea mutațiilor somatice în cancer, standardizarea insuficientă a parametrilor de secvențiere limitează încă implementarea sa în practica clinică (1), în principal pentru variantele prezente la frecvențele joase ale alelelor (4). Prin urmare, am abordat problema tehnică a determinării corecte a adâncimii de secvențiere în diagnosticul NGS pentru a obține detectări sigure și reproductibile ale variantelor VAF scăzute., În special, am efectuat calcule teoretice pentru a determina adâncimea optimă de acoperire pentru Probabilitatea dorită de detectare a variantelor la frecvențe joase ale alelelor, luând în considerare rata de eroare de secvențiere. Mai mult, am confirmat aceste calcule teoretice prin efectuarea de experimente de diluare. Pe baza acestor observații, recomandăm o adâncime de acoperire de 1.650 sau mai mare (împreună cu pragul respectiv de cel puțin 30 de citiri mutante) pentru a apela variante ≥3% pentru a obține o probabilitate de detectare a variantelor de 99,9%, folosind doar eroarea convențională de secvențiere NGS., Variante în 1-3% VAF interval poate fi numit numai dacă a obținut secvența de date este de înaltă calitate (medie Q30 > 90%) și/sau atunci când variantele sunt confirmate de replicare sau metoda ortogonală (1, 11, 16). De asemenea, oferim un calculator teoretic (software) simplu, ușor de utilizat, pentru a ajuta laboratoarele să rezolve adâncimea corectă de secvențiere și numărul minim corespunzător de citiri ale variantelor, luând în considerare rata de eroare de secvențiere. Calculatorul nostru simplu poate ajuta la minimizarea rezultatelor fals pozitive și fals negative în diagnosticul NGS.,cu toate acestea, adâncimea corectă de secvențiere este influențată și de factori specifici testului (1). Erori pot apărea în mai multe etape în timpul procesării ADN și pregătirii bibliotecii. Cele mai frecvente sunt erorile de amplificare introduse în timpul pregătirii bibliotecii NGS (1, 12, 17). Alte surse comune de erori au legătură cu complexitatea bibliotecii (numărul de molecule ADN independente analizate), calitatea ADN și complexitatea regiunii țintă etc. Toate erorile potențiale specifice testului trebuie abordate prin proiectarea testului, Validarea metodei și controlul calității.,în prezent, strategiile emergente de corectare a erorilor, atât computaționale, cât și experimentale, sunt dezvoltate pentru a atenua ratele de eroare ridicate în diagnosticul NGS (11). Până în prezent, printre cele mai promițătoare metode de corectare a erorilor se numără UMI (identificatori moleculari unici), care corectează erorile PCR (18) și abordările de corecție semnal-zgomot (11). Aceste progrese încearcă să reducă LOD, crescând astfel precizia de secvențiere necesară pentru oportunitățile viitoare în diagnosticul NGS.,

pentru a îmbunătăți standardizarea în NGS de diagnostic, estimarea adâncimii de acoperire corectă este un punct de plecare recomandat atunci când se evaluează pragurile din jurul unui anumit test NGS. Cu toate acestea, nu există încă orientări publicate cu privire la cerințele tehnice minime și raportarea acesteia în NGS, deosebit de importante în detectarea mutațiilor clonale și subclonale în diagnosticul cancerului., Acest lucru se datorează în principal gamei largi de abordări de pregătire a bibliotecilor și numeroaselor variabile care joacă un rol în fiecare test NGS specific, care sunt dificil de standardizat, împreună cu variabilitatea inter-laborator. Prin urmare, definirea cerințelor tehnice minime și raportarea acesteia în NGS este foarte de dorit., Bazat pe experiența noastră în diagnosticul NGS în haemato-oncologie, vă sugerăm să raporteze cel puțin următorii parametri tehnici: LOD, eroare globală de NGS test (sau cel puțin de secvențiere rata de eroare), cantitatea de ADN-ul de intrare, sursa și calitatea ADN-ul, minim de acoperire adâncime și procentul vizat baze esalonate la această adâncime minimă, numărul total de țintă citește acoperă varianta regiune și numărul de citește sprijinirea varianta. O atenție deosebită ar trebui acordată standardizării NGS a probelor încorporate în parafină fixă cu formalină (FFPE) (19, 20).,luate împreună, studiul nostru evidențiază importanța adâncimii corecte de secvențiere și numărul minim de citiri necesare pentru detectarea fiabilă și reproductibilă a variantelor cu VAF scăzut în NGS de diagnostic. Calculul adâncimii corecte de secvențiere pentru o rată de eroare dată folosind calculatorul nostru teoretic (software) ușor de utilizat poate ajuta la minimizarea rezultatelor fals pozitive și fals negative în diagnosticul NGS, în situații legate de mutații subclonale, printre altele., Testarea riguroasă și cerințele minime standardizate pentru diagnosticul NGS este deosebit de de dorit pentru a asigura rezultate corecte în setările clinice.

disponibilitatea datelor

seturile de date generate pentru acest studiu sunt disponibile la cerere rezonabilă autorului corespondent.AP și Ek au proiectat studiul, au interpretat rezultatele și au scris manuscrisul. AP, LS, TD și PS au efectuat analiza NGS. Pt a colectat probele pacientului și datele clinice. MV a efectuat analiza bioinformatică și a scris codul calculatorului. TN pregătit aplicație web., Toți autorii au citit și aprobat versiunea finală a manuscrisului.

de Finanțare

Acordarea de sprijin: MZ CR VES16-32339A, în partea de MH CZ—DRO (FNOl, 00098892).

Declarație privind conflictul de interese

autorii declară că cercetarea a fost efectuată în absența oricăror relații comerciale sau financiare care ar putea fi interpretate ca un potențial conflict de interese.

mulțumiri

ne cerem scuze multor autori ale căror articole nu au putut fi citate din cauza limitelor de referință.,

Supplementary Material

1. Jennings LJ, Arcila ME, Corless C, Kamel-Reid S, Lubin IM, Pfeifer J, et al. Guidelines for validation of next-generation sequencing-based oncology panels: a joint consensus recommendation of the Association for Molecular Pathology and College of American Pathologists. J Mol Diagn. (2017) 19:341–65. doi: 10.1016/j.jmoldx.2017.01.011

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

2., D’Haene N, Le Mercier M, De Neve N, Blanchard O, Delaunoy M, El Housni H, et al. Clinical validation of targeted next generation sequencing for Colon and Lung cancers. PLoS ONE. (2015) 10:e0138245. doi: 10.1371/journal.pone.0138245

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

3. Deans ZC, Costa JL, Cree I, Dequeker E, Edsjo A, Henderson S, et al., Integration of next-generation sequencing in clinical diagnostic molecular pathology laboratories for analysis of solid tumours; an expert opinion on behalf of IQN path ASBL. Virchows Arch. (2017) 470:5–20. doi: 10.1007/s00428-016-2025-7

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

4. Ivanov M, Laktionov K, Breder V, Chernenko P, Novikova E, Telysheva E, et al., Spre standardizarea secvențierii de generație următoare a probelor FFPE pentru Oncologie Clinică: obstacole intrinseci și soluții posibile. J Transl Med. (2017) 15:22. doi: 10.1186/s12967-017-1125-8

PubMed Abstract | CrossRef Textul Complet | Google Scholar

5. Bacher U, Shumilov E, Flach J, Porret N, Joncourt R, Wiedemann G și colab. Provocări în introducerea secvențierii de generație următoare (NGS) pentru diagnosticarea malignităților mieloide în utilizarea clinică de rutină. Cancerul De Sânge J. (2018) 8: 113. doi: 10.,1038/s41408-018-0148-6

PubMed Abstract | CrossRef Textul Complet | Google Scholar

6. Merker JD, Devereaux K, IAFRATE AJ, Kamel-Reid S, Kim AS, Moncur JT, și colab. Testarea competenței probelor standardizate arată un acord interlaborator foarte ridicat pentru testele oncologice clinice de ultimă generație bazate pe secvențiere Arch Pathol Lab Med. (2019) 143:463–71. doi: 10.5858 / arpa.,2018-0336-CP

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

8. Brieghel C, Kinalis S, Yde CW, Schmidt AY, Jonson L, Andersen MA, et al. Deep targeted sequencing of TP53 in chronic lymphocytic leukemia: clinical impact at diagnosis and at time of treatment. Haematologica. (2019) 104:789–96. doi: 10.3324/haematol.2018.195818

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

9., Campo E, Cymbalista F, Ghia P, Jager U, Pospisilova S, Rosenquist R, et al. TP53 aberrations in chronic lymphocytic leukemia: an overview of the clinical implications of improved diagnostics. Haematologica. (2018) 103:1956–68. doi: 10.3324/haematol.2018.187583

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

10. Malcikova J, Tausch E, Rossi D, Sutton LA, Soussi T, Zenz T, et al., ERIC recommendations for TP53 mutation analysis in chronic lymphocytic leukemia-update on methodological approaches and results interpretation. Leukemia. (2018) 32:1070–80. doi: 10.1038/s41375-017-0007-7

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

11. Salk JJ, Schmitt MW, Loeb LA. Enhancing the accuracy of next-generation sequencing for detecting rare and subclonal mutations. Nat Rev Genet. (2018) 19:269–85. doi: 10.1038/nrg.2017.,117

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

12. Quail MA, Smith M, Coupland P, Otto TD, Harris SR, Connor TR, et al. A tale of three next generation sequencing platforms: comparison of Ion Torrent, Pacific Biosciences and Illumina MiSeq sequencers. BMC Genomics. (2012) 13:341. doi: 10.1186/1471-2164-13-341

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

14., Obr A, Prochazka V, Jirkuvova A, Urbankova H, Kriegova E, Schneiderova P, et al. TP53 mutation and complex karyotype portends a dismal prognosis in patients with mantle cell lymphoma. Clin Lymphoma Myeloma Leuk. (2018) 18:762–8. doi: 10.1016/j.clml.2018.07.282

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

15. Turcsanyi P, Kriegova E, Kudelka M, Radvansky M, Kruzova L, Urbanova R, et al., Îmbunătățirea stratificării riscului pacienților cu leucemie limfocitară cronică utilizând rețele de similitudine multivariate ale pacienților. Leuk Rez. (2019) 79: 60-8. doi: 10.1016 / j. leukres.2019.02.005

PubMed Abstract | CrossRef Textul Complet | Google Scholar

18. Smith T, Heger A, Sudbery I. UMI-tools: modelarea erorilor de secvențiere în identificatorii moleculari unici pentru a îmbunătăți precizia cuantificării. Genomul Res. (2017) 27: 491-9. doi: 10.1101/gr.209601.,116

PubMed Abstract | CrossRef Full Text | Google Scholar

Lasă un răspuns

Adresa ta de email nu va fi publicată. Câmpurile obligatorii sunt marcate cu *